当前位置:主页 > 理工论文 > 生物学论文 >

细胞外基质预防氧化应激诱导干细胞早衰的机制研究

发布时间:2025-05-01 09:02
  [目的]:脐带间充质干细胞(umbilical-cord derived mesenchymal stem cells,UC-MSCs)可以通过便捷无害的方法获得,在体外可长期传代培养,在再生治疗领域有广泛的应用前景。在体内,干细胞生长在细胞外基质(extracelluarmatrix,ECM)中,而脱离了体内生长微环境后,干细胞受到体外各种不利因素的影响下容易发生过早衰老,极大地降低了干细胞的实际应用效果。脱细胞的细胞外基质(decelluarizedextracelluarmatrix,DECM)能够在体外模拟干细胞的体内生长微环境。人红系衍生的核因子-2(nuclear factor erythroi d-2-related factor 2,NRF-2)调控细胞内环境稳态和抗衰老相关基因表达。本课题旨在研究DECM是否能够通过NRF-2来防止过氧化氢(hydrogen peroxid,H2O2)造成的UC-MSCs早衰。[研究方法]:首先确定200 μM是适合诱导UC-MSCs早衰的H2O2亚致死浓度。分别使用普通组织培养聚苯乙烯(tissue culture polystyre...

【文章页数】:85 页

【学位级别】:硕士

【部分图文】:

图2:?H2〇2对UC-MSCs增殖能力的影响

图2:?H2〇2对UC-MSCs增殖能力的影响

结果?细胞外基质预防氧化应激诱导干细胞早衰的机制研宄??结果??3.1检测H202对UC-MSCs衰老的影响??为了检测吐02对UC-MSCs增殖能力的影响,我们首先将UC-MSCs按照1000??个细胞/cm2的密度接种在普通96孔板中,待贴细胞密度达到50%左右时,以100?....


图3:在H2〇2造成的细胞氧化应激微环境中,以不同浓度H2〇2?(10〇nM,?20〇mM,400^M)??预处理UC-MSCs,以aMEM(10°/〇FBS,lOOU/mL青霉素,lOOjxg/mL链霉素)培养作为对照??组,在预处理后72小时后进行流式细胞术分析

图3:在H2〇2造成的细胞氧化应激微环境中,以不同浓度H2〇2?(10〇nM,?20〇mM,400^M)??预处理UC-MSCs,以aMEM(10°/〇FBS,lOOU/mL青霉素,lOOjxg/mL链霉素)培养作为对照??组,在预处理后72小时后进行流式细胞术分析

111?1?M??CTTFJL?100?mm?2〇o?mm??h2〇2??(B)??100-1?*?mm?ctrl??r^-j?h2〇2?100?mm??〇q.?r.?H2O2?200?mM??'f“?:.?H2O2?400?mM??f?6〇-|?1??爸40-?■画?★??CL....


图4:在H2〇2造成的细胞氧化应激微环境中,以不同浓度H2〇2(1〇〇^M,?200^M,400pM)??预处理UC-MSCs,以aMEM?(10%FBS,?100U/mL青霉素,10〇ng/mL链霉素)培养作为对照??

图4:在H2〇2造成的细胞氧化应激微环境中,以不同浓度H2〇2(1〇〇^M,?200^M,400pM)??预处理UC-MSCs,以aMEM?(10%FBS,?100U/mL青霉素,10〇ng/mL链霉素)培养作为对照??

细胞外基质预防氧化应激诱导干细胞早衰的机制研宄?结果??±1.39%,较200?_组没有进一步上调,且贴壁细胞较别组明显减少。??(A)?(B)??CTRL??^???100?(IM?200?mM?400?uM??_?麵一—_??dapi?m?m?§?i?1?-??H?■■■■■....


图5:对UC-MSCs来源的DECM材料形态分析

图5:对UC-MSCs来源的DECM材料形态分析

结果?细胞外基质预防氧化应激诱导干细胞早衰的机制研究??(A)?(B)??.?■'??、々:\?<、,八入\/???,?'、:':i?:…?'?c?1?,???/?,??:二;??'■?*t??????图5:对UC-MSCs来源的DECM材料形态分析。(A)在光学显微镜下观察,D....



本文编号:4042012

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/projectlw/swxlw/4042012.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户bebf6***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com